小鼠肝細胞分離是生物醫學研究領域的一項基本技術，對于肝臟疾病機制研究、藥物篩選和細胞治療等具有重要意義。然而，肝細胞分離過程中的純度和存活率是影響實驗結果的關鍵因素。本文將分享一些實用的分離技巧，旨在提高小鼠肝細胞的純度和存活率。

　　一、實驗前的準備工作

　　1.選擇合適的實驗小鼠：選用健康、適齡的小鼠，一般選擇8-12周齡的成年小鼠，以保障肝細胞的活力。

　　2.實驗材料準備：確保所有實驗器材無菌，包括手術器械、離心管、培養皿等。同時，準備好預冷的PBS緩沖液、酶消化液等試劑。

　　3.環境控制：實驗過程中，保持實驗室溫度在22-25℃，以減少細胞應激反應。

　　二、小鼠肝細胞分離步驟及技巧

　　1.麻醉與消毒：采用戊巴比妥鈉對小鼠進行麻醉，剃毛并消毒手術部位。

　　2.開腹與肝臟取材：沿小鼠腹部中線切開，暴露肝臟，用無菌眼科剪剪下肝臟，放入預冷的PBS緩沖液中。

　　3.肝細胞消化：將肝臟剪成小塊，加入含有酶消化液的培養皿中，置于37℃水浴鍋中振蕩消化。

　　以下為提高純度和存活率的技巧：

　　a.酶濃度優化：根據肝臟的軟硬程度，調整酶消化液的濃度，避免消化過度或不足。

　　b.消化時間控制：密切觀察肝臟組織的變化，一般在20-30分鐘內完成消化，避免時間過長導致細胞損傷。

　　c.輕柔操作：在消化過程中，輕柔搖動培養皿，避免劇烈振蕩造成細胞損傷。

　　4.細胞過濾與洗滌：消化結束后，用200目細胞篩過濾，去除未消化的組織塊。然后，用預冷的PBS緩沖液洗滌細胞，去除殘留的酶和雜質。

　　三、細胞純化與存活率檢測

　　1.差速離心法：將過濾后的細胞懸液低速離心（500rpm）去除紅細胞，再進行高速離心（1200rpm）獲得純凈的肝細胞。

　　2.臺盼藍染色法：對分離得到的肝細胞進行臺盼藍染色，計算活細胞比例，評估細胞存活率。

　　四、提高細胞純度和存活率的關鍵點

　　1.無菌操作：全程嚴格無菌操作，防止細菌、真菌污染。

　　2.預冷處理：所有試劑和器材均需預冷，降低細胞應激反應。

　　3.短時間內完成操作：從肝臟取材到細胞分離，盡量在短時間內完成，減少細胞在體外環境中的損傷。

　　小鼠肝細胞分離技術在生物醫學研究中具有重要價值。通過掌握上述技巧，我們可以在一定程度上提高肝細胞的純度和存活率，為后續實驗奠定堅實基礎。在實際操作過程中，還需不斷總結經驗，優化實驗方案，以獲得更高質量的肝細胞。